细胞生物学实验（第2版）

　　《细胞生物学实验》为高等学校细胞生物学实验教学用书。内容涉及细胞膜的特性，细胞器的分离，细胞骨架成分的观察，细胞成分的化学测定，染色体标本的制备与分析，放射性同位素在细胞生物学中的应用，细胞生理，细胞免疫，细胞电泳，细胞培养，细胞融合，细胞的遗传转化，显微镜，显微摄影及电镜技术等方面共54个实验。《细胞生物学实验》分为两部分，前26个实验为小实验性质，主要用于各类院校生物学基础课程细胞生物学实验之用。后28个实验为大实验性质，专门用于细胞生物学专业课程及相关专业硕士生的专业技术训练。《细胞生物学实验》除了用于实验教学之外，还可供有关科研人员参考。

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实验一 普通光学显微镜及其使用
实验二 特殊显微镜及其使用
Ⅰ．暗视场显微镜
Ⅱ．相差显微镜
Ⅲ．荧光显微镜
实验三 显微摄影术
实验四 电子显微镜的演示
实验五 细胞凝集反应
实验六 细胞膜的渗透性
实验七 巨噬细胞吞噬现象的观察
实验八 线粒体和液泡系的超活染色与观察
实验九 叶绿体的分离与荧光观察
实验十 线粒体的分离与观察
Ⅰ．大鼠肝线粒体的分离
Ⅱ．玉米线粒体的分离
实验十一 动物细胞微丝束的光学显微镜观察
实验十二 微管和中等纤维的免疫荧光观察v
Ⅰ．动物细胞微管的观察
Ⅱ．动物细胞中等纤维的观察
Ⅲ．植物细胞微管的观察
实验十三 DNA的Feulgen染色法
实验十四 酸性磷酸酶的显示方法
实验十五 动物染色体标本的制备与观察
Ⅰ．小白鼠骨髓细胞染色体的制备方法
Ⅱ．黑斑蛙或蟾蜍骨髓细胞染色体标本的制备
实验十六 植物染色体标本的制备与观察
实验十七 染色体核仁组成区的银染色法
实验十八 减数分裂压片标本制备与观察
实验十九 联会复合体的染色与观察
实验二十 动物细胞培养
Ⅰ．原代细胞培养
Ⅱ．传代细胞培养与观察
实验二十一 植物组织培养
实验二十二 植物原生质体的分离和培养
实验二十三 细胞电融合方法
实验二十四 显微放射自显影技术
实验二十五 细胞电泳
实验二十六 类坏死的处理及死、活细胞鉴别
实验二十七 透射电镜样品的制备与观察
Ⅰ．组织的固定和包埋
Ⅱ．支持膜的制作
Ⅲ．玻璃刀的制作
Ⅳ．包埋块的修正
Ⅴ．切片
Ⅵ．切片的染色
Ⅶ．透射电镜样品的观察
实验二十八扫描电镜样品的制备与观察
实验二十九电镜酶化学技术
Ⅰ．三磷酸腺苷酶
Ⅱ．酸性磷酸酶
实验三十 细胞器的分离
实验三十一 膜蛋白质的分离
实验三十二 脂质体的制备
实验三十三 荧光标记技术
实验三十四 免疫胶体金技术
实验三十五 MAT法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活的影响
实验三十六 腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法
实验三十七 改良的空斑形成细胞测定法
实验三十八 T淋巴细胞玫瑰花结实验
实验三十九 H标记化合物研究细胞内DNA和RNA的合成
实验四十 H标记膜片法测定细胞S期的DNA复制
实验四十一 用H标记化合物研究细胞内DNA、RNA和蛋白质代谢的动态过程
实验四十二 用P一磷酸氢二钠研究细胞内ATP代谢的动态过程
实验四十三放射免疫测定法
实验四十四 人体染色体组型分析与分带技术
Ⅰ．微量全血培养
Ⅱ．人淋巴细胞染色体标本的制作
Ⅲ．人类体细胞染色体组型分析
Ⅳ．人类染色体G带显示法
实验四十五人体姊妹染色单体区分染色法
实验四十六植物染色体组型分析与分带技术
Ⅰ．植物染色体标本制备的去壁低渗法
Ⅱ．植物染色体组型分析方法
Ⅲ．植物染色体Giemsa c一带技术
Ⅳ．植物染色体Giemsa N一带技术
Ⅴ．植物染色体Giemsa G一带技术
实验四十七 杂交瘤技术
实验四十八 哺乳类细胞中早熟染色体凝集的诱导和观察
实验四十九 哺乳动物早期胚胎细胞的活体观察及体外培养技术
实验五十 植物细胞的悬浮培养
实验五十一 植物原生质体融合与体细胞杂交
Ⅰ．聚乙二醇法诱导原生质体融合
Ⅱ．供体一受体原生质体融合与胞质杂种的形成
实验五十二 质粒DNA的快速提取
实验五十三 用根癌农杆菌介导植物细胞的遗传转化
实验五十四 植物细胞免疫荧光原位杂交